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懸浮細胞培養步驟

懸浮細胞

 

材料 :

對於細胞凍存

對數晚期的75 cm2 T型細胞瓶(約40 mL / T瓶)

細胞凍存液(通常含有10%二甲基亞碸 ,DMSO

標記的低溫小瓶(對數晚期每40 mL體積的細胞約5個)

 

對於解凍

冷組織培養基

25平方厘米的T型燒瓶

 

細胞凍存程序 :

凍存

1)在顯微鏡下檢查細菌 ,酵母或真菌汙染 。

2)測試支原體樣品 。

3)當細胞達到對數晚期時 ,使用Coulter計數器確定細胞密度 。計算燒瓶中的細胞總數 ,並確定所需的細胞凍存液的量 。 (細胞應重懸於5,000,00020,000,000細胞/ mL的冷凍培養基中 。)

凍結

4)將細胞在50mL Falcon管中以1000g離心15分鍾 。

5)當細胞旋轉時 ,製備細胞凍存液(例如 ,90FBS ,10DMSO) 。標記低溫小瓶 ,包括日期 ,細胞類型和用戶首字母 。

6)從離心細胞中吸走上清液並加入細胞凍存液 。研磨細胞直至均勻 。

7)每個低溫小瓶快速分裝1 mL細胞凍存液。擰緊每個小瓶 。

8)將小瓶放入儲存盒並將用紙巾絕緣的盒子放入Tupperware®容器中 。將整個容器放入-20°C冰箱 。

93小時後 ,將容器轉移至-80℃冰箱並儲存過夜 。

10)第二天 ,將細胞放入液氮罐中的適當架子中 。

後凍結

11)從液氮罐中取出一個小瓶 ,並按照下麵的解凍複蘇程序測試凍存是否成功 。

 

複蘇程序 :

1)從液氮罐中慢慢取出適當的托盤架 。取下長安全銷 ,從適當的托盤中取出一個小瓶 。

2)將托盤放回插槽中 ,然後將安全銷放回原位 。將托盤架再次送回液氮罐和蓋罐 。

3)在37°C水浴中快速解凍小瓶 ,直到隻剩下一小塊冰粒 。用乙醇噴灑小瓶,擦拭 ,並放入罩中 。

4)將小瓶(~1mL)的內容物吸移到T25燒瓶中 。

5)緩慢加入4mL冷培養基 ,每10秒鍾以約1滴的速度加入 ,偶爾旋轉 。再加入5mL培養基 。

6)將燒瓶放入適當的培養箱中 。

7)由於細胞凍存液含有二甲基亞碸(DMSO) ,6-12小時後將細胞分解並重懸於新T25培養瓶中的新鮮預熱培養基中 。

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